ELISA(Enzyme-Linked Immunosorbent Assay,酶联免疫吸附测定)是一种高度敏感和特异的免疫学检测技术,广泛应用于生物医学研究、临床诊断和药物开发中。它利用抗原-抗体反应的特异性,结合酶催化底物显色的放大效应,实现对目标分子的定量或定性检测。本文将详细解析ELISA的实验机制原理,并针对常见问题进行深入分析和解决方案提供,帮助读者全面掌握这一技术。
ELISA的基本原理
ELISA的核心原理基于抗原-抗体的特异性结合,以及酶标记的信号放大系统。实验通常在微孔板(如96孔板)上进行,通过固相载体(如聚苯乙烯板)固定抗原或抗体,然后依次加入样本、酶标记抗体和底物,最后通过颜色变化或荧光信号进行检测。ELISA的主要类型包括直接ELISA、间接ELISA、夹心ELISA(Sandwich ELISA)和竞争ELISA,每种类型适用于不同的检测需求。
抗原-抗体反应的基础
抗原-抗体反应是ELISA的基石。抗原(Antigen)是外来物质(如蛋白质、病毒颗粒),能诱导免疫系统产生抗体;抗体(Antibody)是免疫球蛋白,能特异性识别并结合抗原。这种结合是高度特异的,类似于“钥匙与锁”的匹配。在ELISA中,这种反应被固定在固相表面,形成稳定的复合物,便于后续洗涤和检测。
例如,在夹心ELISA中,首先将捕获抗体(Capture Antibody)包被在微孔板上,然后加入样本。如果样本中含有目标抗原,它会与捕获抗体结合。接着,加入检测抗体(Detection Antibody),该抗体也与抗原结合,形成“三明治”结构(抗体-抗原-抗体)。这种结构确保了高特异性,因为需要两个抗体同时识别同一抗原的不同表位。
酶标记与信号放大
为了检测结合事件,ELISA使用酶标记的二抗或抗原。常用酶包括辣根过氧化物酶(HRP)和碱性磷酸酶(AP)。这些酶能催化底物产生可测量的信号,如颜色变化(比色法)或荧光(荧光法)。信号强度与目标分子的浓度成正比,实现定量分析。
例如,HRP酶催化3,3’,5,5’-四甲基联苯胺(TMB)底物,产生蓝色产物,在450 nm波长下吸光度增加。通过酶标仪读取吸光度值,与标准曲线比较,即可计算样本浓度。这种酶放大效应使ELISA的灵敏度达到皮克(pg)级别,远高于直接免疫沉淀。
ELISA的实验步骤详解
ELISA实验通常分为包被、封闭、加样、孵育、洗涤、检测和显色等步骤。每个步骤都需要精确控制时间和温度,以确保结果可靠。以下是夹心ELISA的典型流程,以检测血清中的细胞因子(如IL-6)为例。
1. 包被(Coating)
将捕获抗体稀释至适当浓度(如1-10 μg/mL),加入微孔板中,每孔100 μL。4°C孵育过夜(12-16小时),使抗体吸附在板上。目的是固定捕获分子。
原理:抗体通过疏水作用和静电作用吸附在聚苯乙烯表面。如果包被不充分,会导致假阴性。
示例:使用抗IL-6单克隆抗体包被96孔板。第二天,倾倒液体并用PBS(磷酸盐缓冲液)轻轻拍打清洗3次,每孔200 μL,去除未结合抗体。
2. 封闭(Blocking)
加入封闭液(如含1-5%牛血清白蛋白BSA或脱脂奶粉的PBS),每孔200 μL,室温孵育1小时。目的是阻断板上未结合位点,防止非特异性结合。
原理:未封闭的位点会吸附样本中的无关蛋白,导致背景信号升高。封闭蛋白占据这些位点,提高特异性。
示例:使用5% BSA封闭后,洗涤3次。如果省略此步,空白孔的吸光度可能从0.05升至0.5以上,影响准确性。
3. 加样与孵育(Sample Incubation)
加入稀释的样本(如血清稀释1:10),每孔100 μL,室温孵育1-2小时。目标抗原与捕获抗体结合。
原理:孵育时间需优化,过短导致结合不完全,过长可能增加非特异性结合。温度控制在室温(20-25°C)或37°C,以模拟生理条件。
示例:检测患者血清IL-6浓度。样本稀释后加入,孵育后洗涤3次,去除未结合物质。
4. 加入检测抗体(Detection Antibody)
加入酶标记的检测抗体(如HRP-抗IL-6抗体),每孔100 μL,室温孵育1小时。形成夹心复合物。
原理:检测抗体必须与抗原的另一表位结合,避免与捕获抗体竞争。浓度通常为0.1-1 μg/mL。
示例:使用HRP标记的多克隆抗体。孵育后洗涤,确保只留下特异性结合的复合物。
5. 显色与检测(Substrate Development)
加入底物溶液(如TMB),每孔100 μL,避光孵育10-30分钟。颜色变化后,加入终止液(如2M H2SO4)停止反应。使用酶标仪在450 nm读取吸光度。
原理:酶催化底物产生信号,信号强度反映抗原浓度。终止液酸化稳定颜色。
示例:TMB显色后,蓝色变黄色,吸光度从0.1升至2.0。根据标准曲线(已知浓度的标准品绘制),计算样本浓度。例如,标准曲线方程为y = 0.5x + 0.1,其中y为吸光度,x为浓度(pg/mL)。如果样本吸光度为1.0,则浓度 = (1.0 - 0.1)/0.5 = 1.8 pg/mL。
标准曲线的绘制
使用已知浓度的标准品(如重组IL-6,从0到1000 pg/mL)进行系列稀释,绘制标准曲线。这是定量的关键,确保线性范围(R² > 0.99)。
ELISA的常见问题解析
尽管ELISA标准化程度高,但实验中常遇到问题,导致结果不可靠。以下按实验阶段分类,详细分析原因、表现和解决方案,每个问题附带完整示例。
1. 高背景信号(High Background)
表现:空白孔或阴性对照孔吸光度高于0.1(正常<0.05),导致假阳性。
原因:
- 封闭不充分:板上未阻断位点吸附非特异性蛋白。
- 洗涤不彻底:残留抗体或样本。
- 试剂污染:酶标记抗体或底物过期。
解决方案:
- 优化封闭:增加封闭时间至2小时,或使用0.5% Tween-20的PBS洗涤液。
- 检查洗涤:每孔洗涤5次,每次浸泡5分钟。
- 更换试剂:验证试剂有效期,进行新鲜配制。
示例:在一次实验中,空白孔吸光度为0.2。检查发现洗涤缓冲液未加Tween-20,导致蛋白残留。添加0.05% Tween-20后,背景降至0.03。建议每次实验前测试空白孔。
2. 信号过低或无信号(Low or No Signal)
表现:标准曲线最高点吸光度<1.0,或样本信号接近空白。
原因:
- 抗原-抗体结合弱:抗体浓度低、孵育时间短、温度不当。
- 抗原降解:样本储存不当(如反复冻融)。
- 酶活性丧失:底物或酶标记物失效。
解决方案:
- 优化条件:增加抗体浓度2倍,延长孵育至2小时,或在37°C进行。
- 样本处理:新鲜样本或分装冻存(-80°C),避免反复冻融。
- 验证试剂:使用阳性对照样本测试酶活性。
示例:检测血清样本时,信号仅为0.1。原因:捕获抗体浓度仅0.5 μg/mL,结合不足。调整至2 μg/mL后,信号升至1.5。同时,使用新鲜配制的TMB底物,避免光照降解。
3. 非特异性结合(Nonspecific Binding)
表现:阴性对照孔有信号,或不同样本间变异大(CV > 10%)。
原因:
- 样本基质效应:血清中的异嗜性抗体或补体干扰。
- 抗体交叉反应:检测抗体识别无关蛋白。
- 板间变异:包被不均匀。
解决方案:
- 样本稀释:增加稀释倍数(如1:100),或使用中和试剂(如IgG阻断剂)。
- 选择特异性抗体:验证抗体的交叉反应性(Western blot确认)。
- 板间标准化:使用同一批次板,或添加板间校正因子。
示例:患者血清导致阴性对照吸光度0.15。稀释至1:50后,信号降至0.04。进一步使用蛋白A/G柱预处理样本,去除干扰IgG,效果显著。
4. 标准曲线线性差或平台期过早(Poor Standard Curve)
表现:R² < 0.95,或高浓度点信号不增加。
原因:
- 标准品配制错误:稀释不均或污染。
- 酶饱和:高浓度抗原导致信号饱和。
- 仪器问题:酶标仪校准不当。
解决方案:
- 精确稀释:使用移液器准确配制系列稀释,避免连续稀释误差。
- 调整范围:降低最高浓度点,或缩短孵育时间。
- 仪器维护:校准酶标仪,使用标准品验证线性。
示例:标准曲线在500 pg/mL后平台化。调整标准品范围至0-200 pg/mL,并确保TMB孵育15分钟,R²从0.85升至0.98。建议每次实验绘制新曲线。
5. 批次间变异(Inter-batch Variability)
表现:不同实验日结果差异大。
原因:
- 试剂批次不同:抗体亲和力变异。
- 环境因素:温度、湿度波动。
解决方案:
- 使用内部对照:每板添加已知浓度质控样本。
- 标准化操作:记录详细日志,包括温度、时间。
- 选择可靠供应商:优先使用认证试剂盒。
示例:两次实验中,同一样本浓度分别为50和80 pg/mL。引入质控样本(目标浓度50 pg/mL),发现批次2抗体活性低。更换批次后,变异%。
优化ELISA实验的实用建议
为了提高ELISA的可靠性和重现性,以下是一些高级技巧:
- 多重检测:使用多因子ELISA板,同时检测多个目标,节省样本。
- 自动化:采用自动洗板机和加样器,减少人为误差。
- 数据处理:使用软件(如GraphPad Prism)拟合四参数逻辑曲线(4PL),处理非线性标准曲线。
- 验证实验:始终包括阳性/阴性对照和空白,进行重复实验(n≥3)。
- 安全注意:处理生物样本时戴手套,避免交叉污染;底物如TMB可能致癌,需在通风橱操作。
通过掌握这些原理和问题解决方法,您可以显著提升ELISA实验的成功率。如果遇到特定问题,建议参考试剂盒说明书或咨询供应商技术支持。ELISA虽强大,但细节决定成败,坚持标准化操作是关键。
